HIV感染的核心戰場是人的CD4+T細胞。病毒依賴大量宿主蛋白完成復制,同時也要繞過細胞內的多種“限制因子”。哪些宿主基因幫助HIV,哪些又能抑制它,一直缺乏系統性識別。過去的研究多依賴癌細胞系,結果重疊度低,因為HIV已進化出對抗機制,抗病毒因子更難捕捉。
如今,CRISPR技術帶來了轉機。近日,研究人員首次在原代人CD4+T細胞中同時開展全基因組激活(CRISPRa)和敲除(CRISPRn)篩選,系統繪制了HIV與宿主互作的功能圖譜。這項研究不僅發現了數十種已知因子,更找到了多個全新的強效抗病毒蛋白,其中包括一個“叛變”的親病毒蛋白家族成員:PPID。它通過與HIV衣殼結合、阻礙病毒核輸入,實現對感染的抑制。
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研究背景與目的
過去十年,RNA干擾和CRISPR篩選在永生化細胞系中找到了不少HIV依賴因子,但結果重復性差,且很少在原代T細胞中驗證。主要障礙有三:原代T細胞體外感染率低、基因操作困難、抗病毒因子往往表達水平極低或被病毒主動拮抗。
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傳統的敲除篩選容易漏掉那些本來就不高表達的抗病毒基因,而CRISPR激活(CRISPRa)可以實現過表達,正好彌補這一缺口。作者團隊此前已建立原代T細胞的大規模CRISPRa和CRISPRn平臺,能夠同時檢測基因丟失或增強對感染的影響。本研究正是利用這兩個正交平臺,系統尋找促進或限制HIV感染的宿主因子,并深入解析新因子的作用機制。
兩套篩選體系,互補發現
研究人員采用CXCR4嗜性、復制 competent 的GFP標記HIV感染原代人CD4+ T細胞,通過流式分選GFP陽性(感染)和陰性(未感染)細胞,再通過sgRNA豐度判斷基因功能。
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通過CRISPRa(激活,過表達),研究人員找到173個抗病毒因子(富集于GFP陰性)和240個促病毒因子(富集于GFP陽性)。通過CRISPRn(敲除),找到48個抗病毒因子和61個促病毒因子。
兩者的交集很小,說明功能互補。例如,已知抗病毒因子MX2在敲除篩選中不顯著,但在激活篩選中排名靠前,說明它內源表達太低,必須過表達才能顯現效果。
區分T細胞活化和受體變化
很多宿主基因影響感染,可能是通過改變CD4/CXCR4表達或T細胞活化狀態。作者設計了二次池化篩選,同時檢測:HIV感染(高低兩劑量)、VSV-G假型HIV(繞過CD4/CXCR4進入)、CD25/CD69(活化標志)、CD4/CXCR4表面水平。
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結果發現,TBX21、FERMT2等促病毒因子同時上調CXCR4和活化標志。PI16僅在野生型HIV中有效,對VSV-G假型無效,提示作用于病毒進入階段。對于PPID,無論野生型還是VSV-G假型均有效,而且不影響CD4/CXCR4或活化標志,提示作用于進入后階段。
PI16抑制融合,PPID限制核輸入
作者挑選10余個新因子進行個體化驗證,包括:MARCKSL1、TBX21、FERMT2(促病毒),SHISA3、PI16、ITM2A、PPID(抗病毒)。
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結果發現PI16過表達顯著抑制HIV融合,但不影響病毒結合。免疫共沉淀+質譜顯示PI16與CD4、Gα信號蛋白、Arp2/3復合物等多個膜融合相關蛋白直接互作。此外,PPID是CRISPRa篩選中排名第一的抗病毒因子,對CXCR4、CCR5、雙嗜性及傳播/創始株均有效。它屬于親環蛋白家族,其同源蛋白CypA是經典的促病毒因子,主要作用是結合衣殼、防止過早脫殼。
PPID:從“親病毒”到“抗病毒”的關鍵轉變
純化實驗證實,PPID能夠直接結合HIV衣殼,且這種結合依賴衣殼環上的特定氨基酸,G89V、P90A、V86A、H87A等突變均可顯著削弱PPID的抑制效果。進一步研究發現,PPID的TPR結構域對其抗病毒功能不可或缺,缺失TPR2-3幾乎讓PPID完全失效,而破壞其與Hsp90/Hsc70的結合則無影響。功能上,過表達PPID會減少HIV衣殼進入細胞核,這一過程同樣依賴TPR結構域。
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進化分析帶來意外發現:猴、猩猩等非人靈長類的PPID比人源版本抗病毒更強,引入H60P、V177I等單點突變即可提升人源PPID的效果。更有趣的是,將原本促病毒的CypA的PPIase結構域與PPID的TPR結構域融合后,CypA竟然“叛變”成了抗病毒蛋白,且這一轉換依賴TOM70結合位點C296S。綜上,PPID先用PPIase結構域抓住衣殼,再通過TPR結構域招募宿主因子(可能包括TOM70),最終阻礙衣殼進入細胞核。
總結
這項研究首次在原代人CD4+T細胞中完成了全基因組CRISPR激活與敲除雙平臺篩選,系統繪制了HIV-宿主因子功能圖譜,發現了大量未被報道的促病毒和抗病毒因子。其中兩個亮點尤為突出:PI16通過干擾膜融合相關蛋白網絡,抑制病毒進入;PPID則通過結合HIV衣殼并依賴其TPR結構域,限制病毒核輸入,且可通過進化突變增強其抗病毒活性。
這些發現加深了我們對HIV與宿主互作的理解,也為未來抗病毒策略提供了全新候選靶點,例如過表達抗病毒因子的細胞療法或靶向宿主通路的小分子藥物。同時,CRISPRa在原代T細胞中的成功應用,為其他感染性疾病和免疫治療研究開辟了新路徑。
來源:Rathore U et al. Systematic discovery of pro- and anti-HIV host factors in primary human CD4+ T cells. Cell. 2026; doi: 10.1016/j.cell.2026.03.046.
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